記事ID ： 46777

ヒト膵島スフェロイドを用いたin vitro糖尿病研究・創薬評価モデル InSphero社3D InSight™ Islet Microtissue

カテゴリから探す > 創薬研究ツール > 臓器・疾患モデル（Phenotypic Screening） > その他

メーカー名：InSphero AG

InSphero社3D InSight™ Islet Microtissueは、ヒト初代膵島細胞を再凝集させて作製された膵島スフェロイドです。in vitroで再現性の高い糖尿病病態モデルとして使用可能です。

図1. InSphero社3D InSight™ Islet Microtissue
ヒト膵臓から単離した膵島をSingle Cell Suspensionにした後、均一なサイズのスフェロイドに再構成しています。1well当たり1スフェロイドを含んだ形で納品致します。

特長

ヒト膵島をin vitroで再構成した均一なサイズのスフェロイドで、アッセイ内のばらつきを最小化（図1）
ヒト膵島と一致する細胞組成を再現(図2)
長期間にわたりサイズ・ATP・インスリン含量・GSISが安定しており、幅広いアッセイでの評価が可能(図3)
糖尿病治療薬スクリーニング、インスリン分泌能の解析に使用可能(図4)

データ例

図2. 3D InSight™ Islet Microtissuesの細胞構成とインスリン分泌
作製した膵島スフェロイドにおけるβ(Ins)、α(Gcg)、δ(Sst)細胞の割合が、ヒト膵島の割合と同様であることを確認した（左）。各ドナー由来膵島スフェロイドのグルコース添加によるインスリン分泌能を確認した（右）。

図3. 3D InSight™ Islet Microtissuesの長期安定性と機能性
(A) 培養28日間にわたり、膵島スフェロイドの直径は安定して維持された。
(B) 生存性指標であるATP量は培養期間を通して一定であった。
(C) インスリン含量は時間経過とともに増加し、β細胞機能の成熟を示した。
(D) グルコース刺激インスリン分泌（GSIS）はDay 7からDay 28まで安定して保持され、グルコース濃度依存的なインスリン分泌の増加が観察された。

図4. 3D InSight™ Human Islet MicrotissuesのGLP-1応答
Exendin-4（GLP-1受容体作動薬）処理により、グルコース濃度依存的なインスリン分泌の増強が観察された。グルコース濃度依存性だけでなくインクレチン依存性のインスリン分泌制御も保持しており、糖尿病治療薬（GLP-1作動薬など）の評価系として有効である。

商品リスト

メーカー	品番	品名	サイズ
INP	MT-04-002-01-60	3D InSight™ Human Islet Microtissues (60-spheroids)	1 PLATE
INP	CS-07-005-01	3D InSight™ Human Islet Maintenance Medium	500 ML
INP	CS-07-005-02	3D InSight™ Human Islet Maintenance Medium	250 ML

製品使用文献

[1型糖尿病・免疫・炎症]

Yesildag, Burcak et al. “Liraglutide protects β-cells in novel human islet spheroid models of type 1 diabetes.” Clinical immunology (Orlando, Fla.) vol. 244 (2022): 109118. doi:10.1016/j.clim.2022.109118
Pfeiffer, Susanne E M et al. “Effect of IL4 and IL10 on a human in vitro type 1 diabetes model.” Clinical immunology (Orlando, Fla.) vol. 241 (2022): 109076. doi:10.1016/j.clim.2022.109076
Quesada-Masachs, Estefania et al. “Upregulation of HLA class II in pancreatic beta cells from organ donors with type 1 diabetes.” Diabetologia vol. 65,2 (2022): 387-401. doi:10.1007/s00125-021-05619-9

[2型糖尿病・代謝・マイクロバイオーム]

Guraka, Asha et al. “An in vitro investigation of diet-influenced gut bacterial metabolites on the onset of Type 2 diabetes mellitus using a multi-cellular human primary islet model.” NAM Journal vol. 2 (2026): 100076. doi:10.1016/j.namjnl.2026.100076
Mir-Coll, Joan et al. “Human Islet Microtissues as an In Vitro and an In Vivo Model System for Diabetes.” International journal of molecular sciences vol. 22,4 1813. 11 Feb. 2021, doi:10.3390/ijms22041813
Bauer, Sophie et al. “Functional coupling of human pancreatic islets and liver spheroids on-a-chip: Towards a novel human ex vivo type 2 diabetes model.” Scientific reports vol. 7,1 14620. 6 Nov. 2017, doi:10.1038/s41598-017-14815-w

[ベータ細胞の機能解析・増殖・再生]

Title, Alexandra C et al. “Evaluation of the Effects of Harmine on β-cell Function and Proliferation in Standardized Human Islets Using 3D High-Content Confocal Imaging and Automated Analysis.” Frontiers in endocrinology vol. 13 854094. 4 Jul. 2022, doi:10.3389/fendo.2022.854094
Lorza-Gil, Estela et al. “Glucose, adrenaline and palmitate antagonistically regulate insulin and glucagon secretion in human pseudoislets.” Scientific reports vol. 9,1 10249. 16 Jul. 2019, doi:10.1038/s41598-019-46545-6
van Krieken, Pim P et al. “Translational assessment of a genetic engineering methodology to improve islet function for transplantation.” EBioMedicine vol. 45 (2019): 529-541. doi:10.1016/j.ebiom.2019.06.045

[MPS・イメージング]

Wu Jin, Patricia et al. “A Microfluidic Hanging-Drop-Based Islet Perifusion System for Studying Glucose-Stimulated Insulin Secretion From Multiple Individual Pancreatic Islets.” Frontiers in bioengineering and biotechnology vol. 9 674431. 12 May. 2021, doi:10.3389/fbioe.2021.674431
Li, Ge et al. “Multifunctional in vivo imaging of pancreatic islets during diabetes development.” Journal of cell science vol. 129,14 (2016): 2865-75. doi:10.1242/jcs.190843